Coccoidea

Mealybugs

Coccoidea Dactylopius coccus Klassifisering

Regjere	Animalia
Gren	Arthropoda
Underfavn.	Hexapoda
Klasse	Insecta
Underklasse	Pterygota
Infraklasse	Neoptera
Super ordre	Endopterygota
Rekkefølge	Hemiptera
Underordre	Sternorrhyncha

Flott familie

Coccoidea
Handlirsch , 1903 Cochineal på et sitrontre , og dens crenellated ovisac

Den skala insekter ( Coccoidea ) danner en superfamilien av insekter Hemiptera av ordenen av plantelus .

Det er nesten 8500  arter gruppert i 21 til 24 familier. De bor i et bredt utvalg av habitater; fra tundraene (ca. 2000 kjente arter i den palæarktiske sonen) til ekvator . Disse insektene ble tidligere kalt "plante  lus " på grunn av deres munn transformert inn i en stikkpallen slik at de kan suge den saft , enten SAP utviklet for visse grupper, suges inn i barken , eller rå saft tatt fra kroppen. Margen , mens en få arter aspirerer væske fra cellulært parenkym . De som bor i varme troper er større enn de i tempererte soner. Kvinner produserer vanligvis en stor mengde integrerte sekresjoner (voks eller lakk) som beskytter dem og noen ganger dekker dem fullstendig.

Coccoidea spiser på et bredt utvalg av planter , så de fleste av dem betraktes som skadedyr .

Skalainsekter er vanlige insekter, eller har blitt vanlige, eller til og med lokalt invasive , men hvis økologi fortsatt er dårlig forstått.

Evolusjonær historie

I evolusjonens historie ser det ut til at melkeboller dukker opp midt i mesozoikumet (for 140 millioner år siden). De var trolig en del av kullet fauna , og det antas at de spiste mycel . Noen grupper av margarodidae (insekter 10 til 15  mm ) var allerede diversifisert i Nedre kritt (−100 millioner år siden). Mealybugs har blitt parasitter av blomstrende planter ved å utvikle seg sammen med noen av dem. Ofte har cochineals utviklet mutualistiske forhold til maur, så vel som med mikroorganismer som har blitt deres symbionter og produserer essensielle nitrogenholdige stoffer for dem. Ravinneslutninger fra tertiæret ( Eocene , Oligocene og Miocene ) (−55 millioner år siden) har beholdt representanter for nesten alle grupper som eksisterer i dag.

Klassifisering

Den cochineal superfamilien (Coccoidea), inkluderer hemiptera av underordenen Sternorrhyncha . Det er en monofyletisk gruppe , en av de 4 søstergruppene til Sternorrhynchus (de andre 3 er bladlus (Aphidoidea), Whiteflies (Aleyrodoidea) og psyllids (Psylloidea).

Beskrivelse

Skalainsekter er alle parasitter av planter , med sterk seksuell dimorfisme . Den voksne hannen er et bevinget insekt med bare ett par frontvinger. Dens bakvinger er redusert til strukturer som kalles hamulo-manualer , utviklede antenner og ben ( uni-artikulert tarsi ). Han har ingen munnstykker og lever bare en til to dager, tid til å reprodusere. I de fleste familier av cochinealer er hunnen vingeløs , neotenisk i utseende og kan ha reduserte antenner og ben (mange lever festet til planter). De kvinnelige ligner en larve -lignende skall, for å galle eller belagt med voks, mens andre familier som diaspididae kan ha et totalt tap av ben hos voksne kvinner, som fortsatt er fullstendig festet til anlegget.

I tempererte soner måler de i beste fall bare noen få mm, men arter av slekten Callipappus når 40  mm i lengde. I Afrika måler Aspidoproctus maximus (Lounsbury, 1908) opp til 35  mm lang og 20  mm bred.

Noen melkefugler skiller ut et bomullsaktig materiale som består av fine voksagtige filamenter eller voksagtige skalaer. Noen arter har giftig spytt: når planten parasiteres av et stort antall melkefugler, kan det oppstå svarte flekker på bladene som tilsvarer giftstoffer som akkumuleres for å skape en liten lesjon. Til slutt faller bladet, krøller seg opp, blir gult eller nekrose, avhengig av arten.

For noen veldig små arter (vanskelig å observere og legge merke til på planten), kan deres tilstedeværelse oppdages på nivået med de unge bladene: cochinealene fester seg til det unge fremvoksende bladet, og utnytter en konstant tilstrømning av saft, og ' et mykere materiale, derfor lettere å gjennombore. Konsekvensen er en underutvikling av det nye bladet ved punktering. Rundt det er bladet mye mindre utviklet og kan virke litt misformet på grunn av asymmetrien forårsaket av lokal mangel på saft . Vi kan sjekke om de faktisk er cochineals ved å la bladet være på planten i noen dager eller noen få uker, avhengig av plantens utviklingshastighet: insektet vil mate nesten kontinuerlig og produsere sitt voksskjold: dette vil føre til i et tynt lag (vanligvis lysebrunt) tilstede rundt hakket. Ved å skrape forsiktig, skreller vi av all denne lille tynne platen i ett slag, med mindre det er to veldig nær hverandre. Med et veldig godt forstørrelsesglass eller et lite amatørmikroskop, og observerer den delen av platen som sitter fast på bladet, finner vi nær midten av medlemmene av insektet som tillot det å forbli godt festet til planten.

Reproduksjon og livssyklus

Reproduksjonssystemet i denne gruppen er veldig heterogent.

Mealybugs er nesten alltid oviparous, men noen arter er ovoviviparous (eggene som er lagt er allerede embryonert ), og andre er viviparous .

Den hermaphroditism er mulig, for eksempel i noen arter av Icerya ( Monophlebidés ) i disse artene, den australske Cochineal , bærer hver enkelt både mannlige og kvinnelige kjønnsorganer. Det befruktede egget produserer en hermafroditt, og den som unnslipper selvgjødsling (et sjeldent fenomen) vil produsere en bevinget hann ved arrhenotok parthenogenese . Vi kjenner også minst syv former for parthenogenese i cochineals . Flere av disse reproduksjonsmåtene kan eksistere sammen innen en enkelt art, og dermed produsere både parthenogenetiske og bifile linjer. Dette er tilfellet i Frankrike, for eksempel for lecanine fra dogwood , lecanine fra vintreet , lusen til Hesperides eller Cochineal komma fra epletreet .

Parthenogenese består av utvikling av ufruktede egg; det kan være av tre typer:

• thelytoch type  : ufruktede egg produserer bare hunner; dette er fremdeles tilfelle i noen Diaspididae og Margarodidae  ;
• fakultativ type  : ufruktede egg produserer hunner, men bifil reproduksjon resulterer i individer av begge kjønn;
• arrhenotok type  : fra det ufruktede egget kommer bare hannene ut.

Den befruktning  : fremveksten, kjønnsmodne hanner på jakt etter kvinner, styrt av sine feromoner . De parrer seg i løpet av få minutter - flere menn kan observeres på den samme hunnen, parer seg etter hverandre -.

Mealybugs går gjennom tre hovedfaser i utviklingen:

• egget;
• hunnlarven er mobil, eruciform , med tre eller fire larvestadier: L1, L2 og L3 og muligens L4; hunnen har en post-embryonal såkalt parametabolisk utvikling  : uten metamorfose, med larver mer eller mindre som miniatyrvoksne, for deres form så vel som for deres livsstil;
• hannen går gjennom fem trinn; 1 st og 2 nd larve instars, deretter “pre-puppe”, “ nymfe  ” og voksne stadier  . I motsetning til kvinnen, opplever hannen en holometabolisk post-embryonal utvikling  ;
• den voksne: hunnen, ofte fast, legger mange veldig små egg, avsatt under eller bak seg, i en hvit vokspute.

Antall generasjoner per år varierer etter art og klima. Arten sies å være univoltin når den bare produserer en generasjon per år og bi-, tri- eller polivoltin når den produserer flere.

Den fruktbarhet er forskjellig art og sammenhenger, slik som frekvensen av parasittisme;

• Den Parlatoria (diaspidids) vil legge 15 til 20 egg per hunn.
• Tvert imot legger Eulecanium og Saissetia (som den svarte cochinealen av oliventreet) opptil 2000 egg per hunn, men Aspidoproctus (monophlebidae) kan legge 3 ganger mer (opp til omtrent 6000).

Mobilitet

Hannen er bevinget og flyr. I voksen tilstand er hunnen ikke mobil, bortsett fra i Pseudococcidae , og føder ved å feste til stilkene eller bladene til visse planter som hun suger saften fra. Noen familier kan ha kvinnelige hvitløk med utviklede vedheng som i Ortheziidae , mens andre familier som diaspididae kan ha en fullstendig forsvinning av bena hos den voksne hunnen, for å forbli helt festet til planten.

Det er i nymfestadiet at dette dyret sprer seg og koloniserer nye trær, andre planter eller nye deler av vertsplanten. Noen larver 1 m trinn aktivt å bevege seg (dette er tilfellet for eksempel for hvite Cochineal dato flaten ( Parlatoria blanchardi Targioni Tozzetti, 1868 ). Noen er båret bort av vind eller som transporteres av maur som nærmer seg fra sine kolonier for å samle deres dugg . Ved andre trinn, i visse familier som Coccidae og Kermesidae , bosetter larvene seg permanent, til de dør for eksempel for kvinnelige diaspider, eller til de er fantasifull for hannen. Mange arter er fremdeles mobile i andre trinn. I noen familier (som pseudococcidae eller ortheziidae ), forblir hunnen mobil gjennom hele livet.

Mestrings-, forsvars- og beskyttelsesmekanismer

De er mange, og sannsynligvis fortsatt ufullkommen forstått:

• Noen arter har utviklet symbioser med maurene som forsvarer dem i bytte for deres honningdugg.
• Skjold, som noen ganger spiller en rolle som kamuflasje, og voksagtige vakter beskytter dem mot visse rovdyr og dehydrering
• Hunnene posisjonerer seg på deler av plantene der de er bedre skjult, eller hvor de kan dra nytte av avrenningen av regnvann.
• Noen slekter ( Kuwania , Xylococcus , Matsucoccus inkludert Maritime furu cochineal ) beskytter seg selv i planten (under barken , i bladkappene eller i noder på gress eller på usynlige røtter.
• De Eriococcidés beskytte seg i en pose de bygge etter hvert som de vokser. Diaspines skala insekter resirkulerer deres exuvia i deres beskyttende skjold, laget av sekreter sementert av analvæske .
• Larvene til visse hypogeale arter (av familien Margarodidae ) kan i tilfelle vannstress forsinke deres fantasifull , beskytte seg under en vanntett test som de utvikler ved hjelp av deres sekreter, for å overleve der mens de ytre forholdene kommer tilbake. mildere.
• Det finnes forskjellige strategier for å beskytte egg og unge larver. Dette er de sterke, strukturerte ovisacene til den australske Cochineal eller Pulvinaria , eller matter av voksagtige filamenter som er viklet inn av den kvinnelige '' Porphyrophora '' . I ortheziidae , mobil kvinner bære sin ovisac. Kvinner av andre arter ( Kermesidae og mange Coccidae ) beskytter eggene under skjoldet eller under kroppen. I Australia genererer kvinner av slekten Callipappus en "pungdyr" pose ved å invaginere de bakre magesegmentene og legge egg direkte der. Unge larver vil vokse der. Slekten Apiomorpha lager gnagsår på eukalyptus ( hul svulster av anlegget som skyldes spesielt ved injeksjon av spytt) og larvene utvikle det beskyttet mot deres predatorer.

Parasittisme

De er skadedyr som sjelden dreper vertene sine, men kan svekke dem og forårsake problemer innen jordbruk, hagebruk, skogbruk og frukthager. I Frankrike er rundt 110 arter av og til skadelige, og noen få arter anses å være skadedyr (disse er hovedsakelig diaspider, coccids, pseudokokker eller margarodider).

• Noen angrep av trær, kvister og blader av melkeboller blir karakteristiske for urbane miljøer eller svært antropiserte. De finnes også noen ganger på eller under tilstøtende gjenstander (f.eks. Halskjeder som binder treet til innsatsen).
• Når de er mange på bladene eller stilkene, kan disse insektene ødelegge frukttrær og spesielt epletrær .
• The Maritime furu mealybug kan ha blitt favorisert av furumonokulturer og nedgangen av sine rovdyr (f.eks feilen Elatophilus nigricornis Zetterstedt er et rov anthocorid som spesialiserer seg på denne arten, som brukes i integrert plantevern ledelse). Den drepte maritime furuer på omtrent 120 000  ha i Var og Alpes-Maritimes, og den koloniserte Korsika.
• Den Pou San Jose polyphage svekker trær og bærbusker.
• Mulberry-skalaen angriper fersken og solbær . Den kan bekjempes ved biologisk kontroll med et av rovdyrene (Endoparasitic Hymenoptera), Encarsia berlesei (Howard) , samt av den ektoparasittiske hymenoptera Aphytis proclia (Walker) eller en liten marihøne Rhizobius-satellitt (Blaisdell) .
• Antonina graminis angriper urteaktige gress, og kan produsere gule flekker i golfgress.
• Ti arter er observert på vintreet, noen arter noen ganger blir lokalt og øyeblikk skadedyr: bomulls av vintreet ( Pulvinaria vitis L . ), Flassende lønn ( Neopulvinaria innumerabilis (Rathvon) lécanine av Dogwood ( Parthenolecanium Corni , bouche), en mealybug av sitron treet ( Planococcus citri , Risso), med i tilfelle av store utbrudd betydelige tap. de kan overføre sykdommer inkludert "blad roll virus" vindruer (overført i henhold til INRA ved bohem mealybug ( Heliococcus bohemicus ), platan mealybug ( Phenacoccus aceris ) og kornvedlecanin ( Parthenolecanium corni , Bouché ).

For svært lokale angrep, er alternativer til giftige plantevernmidler rengjøring med trykkvann, sprøyting av en løsning av svart såpe med 1  % metylert sprit eller litt soyabønneolje . Å fremme tilstedeværelsen og overlevelsen av ville marihøner , hoverflies og deres larver, så vel som et stort vell av insekter og fugler - spesielt de som spiser maurene som beskytter bladlus og blåklokke - bidrar også til å forhindre utbrudd.

Inndeling

Menneskelige introduksjoner og globaliseringen av plantehandel har endret distribusjonen av visse arter. For eksempel er 159 arter blitt talt på Sicilia , hvorav nesten halvparten nylig er innført avlingsskadedyr. Det er 343 i Italia. De mest kjente er de som parasiterer dyrkede arter.

Det er kjent at de har lav mobilitet og har derfor lav risiko for formidling. De er imidlertid i full ekspansjon i Europa, spesielt på urbane trær stresset av forurensning eller urbane sammenheng og kanskje via transport av parasittiserte planter. De små larvene ser ut til å kunne bæres av vinden.

Pullulations

Utbrudd av cochineals utenfor deres naturlige miljø, spesielt i urbane og peri-urbane klima, er oftere og hyppigere, på alle kontinenter, og de er dårlig forstått. Flere faktorer ser ut til å være i stand til å fremme dem, alt fra et lavere forsvar av det parasittiserte treet eller planten etter mangel på vann, eksponering for visse urbane forurensninger eller tilstedeværelsen av et termohygrometrisk par unaturlig. En viktig forklaring ser ut til å være regresjonen eller forsvinningen av deres naturlige rovdyr (spesielt i byen); spesielt med:

• visse arter av marihøner og deres larver,
• Syrphidae larver ,
• Pyralidae larver ,
• mikro- Hymenoptera ( Chalcidiens og braconidae ) som parasitter og kontroll mealybugs i naturen.

Disse naturlige rovdyrene av hvitblomst ser ut til å trekke seg betydelig tilbake og har ofte forsvunnet lokalt. Den generelle økningen i plantevernmidlet og visse forurensende stoffer i luft, regn, tåke eller dugg kan være delvis ansvarlig for at disse rovdyrene forsvinner.

Naturlige fiender

Deres viktigste fiender (se ovenfor), inkludert visse arter av rovdyrsfugler og parasittiske mikrohymenoptera, ser ut til å være i sterk tilbakegang.

Noen veps eller maur er kjent for å skåne dem og forbruker honningdugg , men forskjellige hymenoptera inkludert Metaphycus helvolus eller Metaphycus lounsburyi parasiterer larvestadier eller hos voksne. Flua Diversinervus elegans parasiserer voksne eller larver. Noen rovdyr av dette insektet har blitt brukt i biologisk bekjempelse, inkludert Chilicorus renipustulatus og Chilicorus nigritus , to små marihøner som spiser på forskjellige arter av cochineals ( diaspins og lecanins ).

Patogenisitet

Som alle stikkende sugende insekter, er disse artene (spesielt introdusert) potensielt farlige for planter på grunn av deres saftpunktering, frigjøring av honningdugg som kan forårsake sotaktig mugg , og på grunn av virusene de kan bidra til. Introdusere i saften. eller vevet de perforerer, men også på grunn av fraværet av spesifikke rovdyr i vertslandet.

Det antas at larver eller egg eller voksne individer ofte blir introdusert andre steder enn i deres opprinnelsesområde med langdistansetransport av grønne planter, potteplanter, plantetrær, frukt og grønnsaker. For eksempel er en tidligere ukjent Cochineal i Europa, Ripersiella hibisci, blitt identifisert i potteplanter fra Callistemon fra Italia, solgt i Sveits våren 2021.

Hagebruk behandlinger

Skjoldet eller voksfibrene som beskytter disse insektene og eggene deres, gjør dem mindre sårbare for eksterne plantevernmidler . De vandige løsningene glir på dem hvis det ikke tilsettes fuktemidler (svart såpe, oppvaskmiddel osv.).

Insektdrepende oljer (hvit olje) brukes ofte mer effektivt i vinterbehandling.

Et annet effektivt middel (men som fremmer utseendet på resistente former) er bruk av systemiske plantevernmidler (stoffer som trenger inn i planten og forgifter det sugende insektet via saften, i alle deler av planten, inkludert røttene. Egg, er det nødvendig å bearbeide en uke til ti dager senere mot larver som klekkes i mellomtiden. Ulempen med denne løsningen er at den også kan forgifte de naturlige rovdyrene til hvitlukkene.

Det er nødvendig å behandle alle berørte planter og i tilfelle gjentakelse undersøke mulige kilder til forurensning, inkludert visse ugress .

I hagearbeid, avhengig av alvorlighetsgraden, arten som skal beskyttes, og typer hvitblomst, kan forskjellige metoder brukes.

Økonomisk eller kulinarisk interesse

Noen arter har spilt en økonomisk rolle, som har falt siden oppfinnelsen av syntetiske stoffer.

Mealybugs kan brukes til å produsere:

• av lakk som skjellakk avledet av arten Kerria lacca som parasitt jujube ( Zizyphus mauritiana ), kussam ( Schleichera oleosa ), palas ( Butea monosperma ), ghont ( Zizyphus xyloporus ) eller ficus religiosa ( Ficus religiosa ). Dens ekstrakt brukes til å lage farmasøytiske dragéer, belegg av visse sjokolader "som ikke smelter i hånden" og tidligere blant de første plastmaterialene (de første 78 rpm skivene);
• av karmin eller rød skarlagenrødt produkt siden antikken fra cochineal Kermes vermilio kalt Kermes fargestoffer eller "frø skarlagen" som lever på Kermes eik i Spania og rundt Middelhavet. Fargematerialet består av kermesic syre (pigmenttype antrakinon , og syre laccaïque vi har oppdaget i egyptiske mumier og til og med i enkelte forhistorisk malerier. Dette fargestoff har vært brukt som et middel for å XVIII th  århundre (astringerende for sår, decongestant øye). Fillipo Silvestri selv mener at dette cochineal ekstrakt var Confectio Alkermes , det stoffet som oftest foreskrevet VIII th og IX th  århundrer. den Alkermes er en italiensk drikk laget ennå med dette cochineal.
• I Mellom- og Sør-Amerika ( Mexico , Peru ), fra Dactylopius coccus (Costa, 1835), matet på den stikkende pæren ( Opuntia ficus-indica ), er en rødrød karmin avledet av ren karminsyre ( antrakinonresistent mot vask). 70 000 cochineals produserer 500  gram karmin.
  Det har blitt brukt til å farge tekstiler, hud, keramikk eller som matfargestoffer, siden i det minste400 f.Kr. J.-C.. De spanske inntrengerne oppdraget i hemmelighet disse cochinealene, blant annet i Malaga , og allerede i 1626 på Kanariøyene i "nopalerier". Den polske hvitluken og den armenske melkenbugen produserer også et rødt fargestoff.
  Syntetiske kjemiske fargestoffer konkurrerte med denne produksjonen fra 1850-tallet, men den fortsatte i Peru som matfargestoffer eller for histologi ("karmin nr. 40 for histologi").
• De Aztecs , inkaenes og Mayans ekstrahert en karmin rød og AJE fra stor skala insekter 2  cm lang. Aje er en gul, fet, vanntett sekresjon produsert av Llaveia axin (Llave). Det ble også brukt som en base for malerier (inkludert i ansiktet). Keramikk, båter, tre eller kalebasser ble vanntett med aje. Endelig var aje også et middel mot diaré og smertestillende for urinsyregikt . I høyden beskyttet den huden mot forfrysninger og chapping.
• Den manna , som er nevnt i Bibelen , som ville ha næret Hebreerne under kryssing av ørkenen kunne ha vært krystallisert Honeydew av en cochineal, muligens Trabutina mannipara (Hemprich & Ehrenberg, 1829), en pseudococcine levende på tamarisk ( Tamarix sp . ) i fjellene i Sinai - det kan også være kolonier av bakterier av nostoc- typen  -. Cochineal, som er et insekt, er ikke en mat som er godkjent i jødedommen i henhold til Bibelen , men honningdugg er en dyreproduksjon og ikke av kjøtt, for honning som er kosher for den .
• De australske aboriginene spiser eukalyptusgaller og apiomorphasene de inneholder som godbiter. I Sørøst-Asia spises monoflebiner (storskala insekter).

Taksonomi

Lavere takster: familier  :

• Aclerididae
• Asterolecaniidae
• Beesoniidae
• Carayonemidae
• Cerococcidae
• Coccidae
• Conchaspididae
• Dactylopiidae
• Diaspididae
• Electrococcidae
• Eriococcidae
• Grimaldiellidae
• Halimococcidae
• Inkaidae
• Jersicoccidae
• Kermesidae
• Kerriidae
• Kukaspididae
• Labiococcidae
• Lecanodiaspididae
• Margarodidae
• Micrococcidae
• Ortheziidae
• Phenacoleachiidae
• Phoenicococcidae
• Pseudococcidae
• Putoidae
• Stictococcidae

Tre hovedtyper av melkeboller

De som har en myk kropp, uten et beskyttende skjold.
De beskytter seg selv under voksagtige filamenter. Pseudococcidae og Margarodidae: Eksempler: Drivhuslukk ( Pseudococcus adonidum ) Insekt i australsk skala ( Icerya purchasei ) De som har en kropp herdet ved impregnering av voks eller lakk (lecaniner eller lécanies, av familien Lecanidae, tidligere). Nå kalles skalaen av denne familien Coccidae. Eksempler: Dogwood skala ( Parthenolecanium corni ) Peach mealybug ( Eulecanium persicae ) Drivhus mealybug ( Saissetia hemisphaerica ) Oliventre skala ( Saissetia oleae ) Vintreet fluffy mellybug ( Pulvinaria vitis ) Eik lecania ( Parthenolecanium quercifex ) Fletcher's Lecania ( Parthenolecanium fletcheri ) Grapevine lecania ( Parthenolecanium corni ) De som har en myk kropp, dekket med en voksaktig beskyttende kuleramme (Diaspididae) hvis form ligner et lite østersskall. Eksempler: San José-lus ( Diaspidiotus perniciosus ) Pome frukttre skala ( Diaspidiotus piri og D. ostraeiformis ) Apple komma-skala ( Lepidosaphes ulmi ) Pære mealybug ( Epidiaspis leperii ) Appelsinlus ( Chrysomphalus aonidum og C. dictyospermi ) Sitrus svart melkebuk ( Parlatoria zizyphii ), Sitrus melblomst ( Lepidosaphes citricola og L. gloweri ) Mulberry skala ( Pseudaulascaspis pentagona )

Eksempler på arter

Ortheziidae-familien

• Orthezia urticae (Linné, 1758)

Margarodidae familie

• Guerriniella serratulae (Fabricius, 1775)
• Icerya purchasei (Maskell, 1879)
• Matsucoccus pini (grønn, 1925)
• Neomargarodes europaeus (Goidanich, 1969)
• Porphyrophora italica (Goidanich, 1963)

Pseudococcidae familie

• Asphodelococcus asphodeli (Bodenheimer, 1927)
• Balanococcus santilongoi (Mazzeo, 1996)
• Chaetococcus phragmitis (Marchal, 1909)
• Delottococcus euphorbiae (Ezzat & McConnell, 1956)
• Dysmicoccus brevipes (Cockerell, 1893)
• Dysmicoccus neobrevipes (Beardsley, 1959)
• Dysmicoccus pietroi (Marotta, 1992)
• Euripersia tomlini (Newstead, 1892)
• Hypogeococcus pungens (Granara de Willink, 1981)
• Nipaecoccus nipae (Maskell, 1893)
• Peliococcus cycliger (Leonardi, 1908)
• Peliococcus vivarensis Tranfaglia , 1981
• Phenacoccus aceris (Signoret, 1875)
• Phenacoccus graminicola (Leonardi, 1908)
• Phenacoccus interruptus (Grønn, 1923)
• Phenacoccus madeirensis (Grønn, 1923)
• Phenacoccus mespili (Signoret, 1875)
• Phenacoccus neohordei (Marotta, 1992)
• Phenacoccus silvanae (Longo & Russo, 1989)
• Phenacoccus yerushalmi (Ben-Dov, 1985)
• Planococcus citri (Risso, 1813)
• Planococcus ficus (Signoret, 1875)
• Pseudococcus affinis (Maskell, 1894)
• Pseudococcus calceolariae (Maskell, 1878)
• Pseudococcus longispinus (Targioni Tozzetti, 1867)
• Puto palinuri (Marotta e Tranfaglia, 1993)
• Puto superbus (Leonardi, 1907)
• Puto tauricus (Borchsenius, 1948)
• Rhizoecus kaktikaner (Hambleton, 1946)
• Rhizoecus falcifer (Kunckel d'Herculais, 1878)
• Rhizoecus lelloi (Mazzeo, 1996)
• Spilococcus mammillariae (Bouché, 1844)
• Spinococcus multispinus (Siraiwa, 1939)
• Trionymus perrisii (Signoret, 1875)
• Trionymus tomlini (Grønn, 1925)
• Vryburgia rimariae (Tranfaglia, 1981)

Eriococcidae familie

• Acanthococcus araucariae (Maskell, 1879)
• Acanthococcus cactearum (Leonardi, 1908)
• Acanthococcus coccineus (Cockerell, 1894)
• Acanthococcus cynodontis (Kiritchenko, 1940)
• Acanthococcus devoniensis (Grønn, 1896)
• Acanthococcus rosannae (Tranfaglia & Esposito, 1985)
• Ovaticoccus agavium (Douglass, 1888)
• Rhizococcus insignis (Newstead, 1891)

Cryptococcidae familie

• Cryptococcus fagisuga Lindinger , 1936

Micrococcidae familie

• Micrococcus silvestrii Leonardi, 1907

Kermesidae familie

• Kermes bacciformis (Leonardi, 1908)
• Kermes gibbosus (Signoret, 1875)
• Kermes roboris (Fourcroy, 1785)
• Kermes vermilio (Planchon, 1864)
• Nidularia pulvinata (Planchon, 1864)

Cerococcidae familie

• Pollinia pollini (Costa, 1857)

Coccidae familie

• Ceroplastes rusci (Linné, 1758)
• Ceroplastes sinensis (Del Guercio, 1900)
• Coccus hesperidum (Linné, 1758)
• Coccus pseudomagnoliarum (Kuwana, 1914)
• Eucalymnatus tessellatus (Signoret, 1873)
• Eulecanium tiliae (Linné, 1758)
• Filippia follicularis (Targioni Tozzetti, 1867)
• Lecanopsis formicarum (Newstead, 1893)
• Lichtensia viburni (Signoret, 1873)
• Nemolecanium graniformis (Wünn, 1921)
• Parthenolecanium corni (Bouché, 1844)
• Parthenolecanium persicae (Fabricius, 1776)
• Parthenolecanium rufulum (Cockerell, 1903)
• Pulvinara mesembryanthemi (Vallot, 1830)
• Pulvinaria floccifera (Westwood, 1870)
• Pulvinaria vitis (Linné, 1758)
• Rhizopulvinaria grassei (Balachowsky, 1936)
• Saissetia coffeae (Walker, 1852)
• Saissetia oleae (Olivier, 1791)
• Scythia aetnensis Russo & Longo, 1990

Aclerididae familie

• Aclerda berlesei (Buffa, 1897)

Asterolecaniidae familie

• Asterodiaspis bella (Russell, 1941)
• Asterodiaspis ilicicola (Targioni Tozzetti, 1888)
• Asterodiaspis roboris (Russell, 1941)
• Bambusaspis bambusae (Boisduval, 1869)
• Planchonia zanthenes (Russell, 1941)

Phoenicococcidae familie

• Phoenicococcus marlatti Cockerell, 1899

Diaspididae familie

• Abgrallaspis cyanophylli (Signoret, 1869)
• Acanthomytilus intermittens (Hall, 1924)
• Acanthomytilus sacchari (Hall, 1923)
• Aonidia lauri (Bouché, 1833)
• Aonidiella aurantii (Maskell, 1879)
• Aonidiella taxus (Leonardi, 1906)
• Aspidiotus hedericola (Leonardi, 1920)
• Aspidiotus nerii (Bouché, 1933)
• Aspidiotus spinosus (Comstock, 1883)
• Aulacaspis rosae (Bouché, 1833)
• Carulaspis carueli (Signoret, 1869)
• Carulaspis juniperi (Bouché, 1851)
• Carulaspis silvestrii Lupo, 1966
• Carulaspis visci (Schrank, 1781)
• Chionaspis pinifoliae (Fitch…)
• Chionaspis salicis (Linné, 1758)
• Chrysomphalus aonidum (Linné, 1758)
• Chrysomphalus dictyospermi (Morgan, 1889)
• Diaspidiotus distinctus (Leonardi, 1900)
• Diaspidiotus osborni (Newell & Cockerell, 1898)
• Diaspidiotus viticola (Leonardi, 1913)
• Diaspis boisduvalii (Signoret, 1869)
• Diaspis bromeliae (Kerner, 1778)
• Diaspis coccois (Lichtenstein, 1882)
• Diaspis echinocacti (Bouché, 1833)
• Duplachionaspis berlesei (Leonardi, 1898)
• Duplachionaspis sicula (Lupo, 1938)
• Dynaspidiotus britannicus (Newstead, 1898)
• Epidiaspis gennadii (Leonardi, 1898)
• Epidiaspis leperii (Signoret, 1869)
• Evallaspis ampelodesmae (Newstead, 1897)
• Fiorinia fioriniae (Targioni Tozzetti, 1867)
• Furchadaspis zamiae (Morgan, 1890)
• Gonaspidiotus minimus (Leonardi, 1896)
• Hemiberlesia lataniae (Signoret, 1869)
• Hemiberlesia rapax (Comstock, 1881)
• Howardia biclavis (Comstock, 1883)
• Ischnaspis longirostris (Signoret, 1882)
• Lepidosaphes beckii (Newmann, 1869)
• Lepidosaphes conchiformis (Gmelin, 1789)
• Lepidosaphes destefanii (Leonardi, 1907)
• Lepidosaphes gloverii (Packard, 1869)
• Lepidosaphes granati Koroneos, 1934
• Lepidosaphes newsteadi (Sulc, 1895)
• Lepidosaphes pinnaeformis (Bouché, 1851)
• Lepidosaphes ulmi (Linné, 1758)
• Leucaspis loewi (Colvée, 1882)
• Leucaspis pini (Hartig, 1839)
• Leucaspis pusilla (Loew, 1883)
• Leucaspis riccae Targioni Tozzetti, 1881
• Lindingaspis rossi (Maskell, 1891)
• Melanaspis inopinata (Leonardi, 1913)
• Mercetaspis sphaerocarpae Gomez Menor, 1927
• Nuculaspis abietis (Schrank, 1776)
• Pallulaspis retamae (Hall, 1926)
• Parlatoria camelliae (Comstock, 1883)
• Parlatoria oleae (Colvée, 1880)
• Parlatoria pergandii (Comstock, 1881)
• Parlatoria ziziphi (Lucas, 1853)
• Pinnaspis aspidistrae (Signoret, 1869)
• Pinnaspis strachani (Cooley, 1899)
• Pseudaulacaspis cockerelli (Cooley, 1897)
• Pseudaulacaspis pentagona (Targioni Tozzetti, 1886)
• Quadraspidiotus cecconii (Leonardi, 1908)
• Quadraspidiotus lenticularis (Lindinger, 1912)
• Quadraspidiotus ostraeformis (Curtis, 1843)
• Diaspidiotus perniciosus (Comstock, 1881)
• Quadraspidiotus zonatus (Frauenfeld, 1868)
• Rungaspis capparidis (Bodenheimer, 1929)
• Saharaspis ceardi (Balachowsky, 1928)
• Suturaspis archangelskyae (Lindinger, 1929)
• Targionia nigra (Signoret, 1870)
• Targionia vitis (Signoret, 1876)
• Unaspis euonymi (Comstock, 1881)

Merknader og referanser

1. (in) "  ScaleNet: Scale Insects (Coccoidea) Database  " på www.sel.barc.usda.gov (åpnet 29. mai 2021 ) .
2. Imre anno, "  Scale insekter: 1 st  del  " Insekter , vol.  2, n o  129,2003( les online [PDF] ).
3. “  Scale families  ” , på www.sel.barc.usda.gov (åpnet 29. mai 2021 ) .
4. beskrevet av Charles Pugsley Lounsbury  (i) 1908.
5. Hervé Jactel , Pierre Menassieu, Alain Ceria, C. Burban, Jacques Regad, S. Normand og Emmanuel Carcreff, “  Et utbrudd av cochineal Matsucoccus feytaudi forårsaker begynnelsen på nedgangen av maritim furu på Korsika  ”, Revue forestière française , vol .  L, n o  n ° 1,1998, s.  33-45 ( DOI  10.4267 / 2042/5510 , les online ).
6. Imre Földi, "  Scale insects: 2 e  part  " Insects , vol.  3, n o  130,2003, s.  29 ( les online [PDF] ).
7. Philippe Kreiter , C. Coquelet og Marcel Thaon , “  The white mulberry cochineal, the main skadedyr av solbær i Rhône-Alpes-regionen  ”, Publications de la Société Linnéenne de Lyon , vol.  71, n o  6,2002, s.  251–252 ( DOI  10.3406 / linly.2002.13399 , lest online , åpnet 29. mai 2021 ).
8. beskrevet av Leland Ossian Howard , 1906.
9. beskrevet av Francis Walker , 1839 (en) Francis Walker, Monographia Chalciditum , vol.  1, London, Balliere,1839.
10. P. Kreiter og L. Dijoux , "  Hvitskala morbær frukthage fersken: Et eksempel på kamp i Alpes-Maritimes  ", Forsvarsanlegg , nr .  501,1998, s.  36-40.
11. (en-US) “  Antonina graminis: huji.ac.il  ” , om plante skadedyr i Midtøsten ,27. august 2015(åpnet 29. mai 2021 ) .
12. J. Jourdheuil, P. Grison og A. Fraval, “  Biological control: en historisk oversikt  ”, Courrier de la Cellule Environnement de l'INRA , n o  151999, s.  37-60 ( les online [PDF] ).
13. (in) "  Chalcidoidea  " på Natural History Museum (åpnet 29. mai 2021 ) .
14. Federal Office for Agriculture, "  Farlig skadedyr utilsiktet innført i Sveits med prydplanter  " , på www.admin.ch (åpnet 16. juni 2021 )
15. Jardiner Autrement , "  Kampen mot cochineals - Jardiner Autrement  " ,2. mai 2018(åpnet 29. mai 2021 ) .
16. Dominique Cardon og Gaëtan du Chatenet, guide til naturlige fargestoffer, planter-fliser, sopp, bløtdyr og insekter , Delachaux og Niestlé,1990, 400  s. ( ISBN  2603007327 ).
17. Hélène Hadas-Lebel, jødedom: praksis, festivaler og symboler ,2011, 118  s. ( ISBN  978-2-7509-0645-0 , leses online ) , s.  33.

Se også

Relaterte artikler

• Bonsaisykdommer
• Fytopatologi
• Invasive arter

Eksterne linker

• (en) "  ScaleNet: Scale Insects (Coccoidea) Database  " , på www.sel.barc.usda.gov (åpnet 29. mai 2021 ) .,
• Imre anno, "  Scale insekter: 1 st  seksjon  " Insekter , vol.  2, n o  129,2003( les online [PDF] ).
• Imre Földi, "  Scale insects: 2 e  part  " Insects , vol.  3, n o  130,2003, s.  29 ( les online [PDF] ).
• "  Hypp: leksikon i plantevern - Avling av skadedyr og deres skade - HYPPZ  " , på ephytia.inra.fr (åpnet 29. mai 2021 )
• "  Caribfruits - Shield cochineals / Begrunnet beskyttelse av frukthager (sykdommer, skadedyr og hjelpestoffer) / Integrert fruktproduksjon  " , på caribfruits.cirad.fr (åpnet 29. mai 2021 )

Bibliografi

• Foldi I., "  Cochineals: insects lite kjent, men fascinerende  ", Insects , vol.  70,1988, s.  4-7 ( les online )
• (no) Foldi I., "  Vokskjertlene i skalainsekter : komparativ ultrastruktur, sekresjon, funksjon og evolusjon (Homoptera: Coccoidea)  " , Annales de la Société Entomologique de France (NS) , vol.  27, n o  to1991, s.  163-188
• (no) Foldi I., “  Forsvarsstrategier i skalainsekter : fylogenetisk inferens og volusjonære scenarier (Hemiptera: Coccoidea)  ” , Opprinnelsen til biologisk mangfold i insekter: fylogenetiske tester av evolusjonære scenarier. Memoirs of the National Museum of Natural History , vol.  173,1997, s.  203-230
• Foldi I., "  List of Cochineals of France (Hemiptera, Coccoidea)  ", Bulletin of the Entomological Society of France , vol.  106,2001, s.  303-308
• (en) Gullan PJ & Kosztarab M., “  Adaptation in Scale Insects  ” , Annual Reviews of Entomology , vol.  42,1997, s.  23-50 ( PMID  15012306 , DOI  10.1146 / annurev.ento.42.1.23 , les online )
• Georges Roque, La Cochenille, fra farging til maling. En materiell fargehistorie, Gallimard,2021( ISBN  2072852315 ).